降落PCR(touchdown PCR),PCR技术主要用于优化PCR条件。在许多情况下,引物的设计使PCR难以进行,如特异性不够容易错配。过高的退火温度会使PCR效率过低,但过低的退火温度会使非特异性扩展过多。
实验材料:
基因样品
仪器、耗材:
PCR仪
实验步骤:
1、反应体积为50 μl。
2、人类CD137胞膜外基因的PCR扩展系统:CD137-PCDNA3质粒4 μl,P1,P2各0.5 μmol/L,MgCl2 2 mmol/L,dNTP 0.4 mmol/L,Taq 5 U。
3、HIgG1Fc片段PCR扩展系统:PGEM-T质粒4,包含HIgG1Fc μl,P3、P4各0.4 μmol/L,MgCl22 mmol/L,dNTP 0.4 mmol/L,Taq 5 U。
4、PCR扩展系统,HBVDNA多聚酶基因:
(1)第一轮:HBVDNA模板4 μl,P5、P6各0.25 μmol/L,MgCl2 1.5 mmol/L,dNTP 0.2 mmol/L,Taq 0.8 U.
(2)第二轮:第一轮PCR产品4,稀释5倍μl为模板,P7、P8各0.25 μmol/L,MgCl2 1.5 mmol/L,dNTP 0.2 mmol/L,Taq 0.8 U。
5、上述反应成分分分别添加到每个灭菌PCR管中,100℃煮5 min,立即冰浴5 min,PCR程序如下:添加TaqDNA聚合酶,混合均匀,离心
6、取 10 μl PCR 膨胀产品,在2%或3%琼脂糖凝胶上电泳,在紫外线下观察膨胀产品。
注意事项:
由于目标是在早期循环中避免低TM值匹配,热启动技术应用于TD-PCR。在设计过程中,退火温度的范围应超过15℃左右,从高于估计TM值至少几度到低于10℃
分析实验结果
1、若无条带:
(1)反应系统错误。重新配置反应系统,确保添加各种试剂的量没有问题。
(2)PCR程序错误。检测PCR仪程序是否正确。
(3)DNA胶问题。DNA凝胶电泳时添加阳性对照。
(4)退火温度不合适。梯度PCR反应优化以2度为梯度的退火温度。
(5)DNA模板太少。增加DNA模板的数量。
(6)引物错误。用BLAST检查引物特异性或重新设计引物。
(7)DNA模板中有抑制剂。确保DNA模板清洁
(8)模板结构复杂。添加DMSO、BSA或甜菜碱。试着减少PCR。
2、PCR产品量过少:
(1)延伸时间过短。延伸时间设置为1kb/分钟。
(2)变性时间过长。变性时间过长会导致DNA聚合酶失活。

